Guía docente de Métodos de Laboratorio en Biología (2001119)

Se recomienda haber cursado Biología en Bachillerato.

En el caso de utilizar herramientas de IA para el desarrollo de la asignatura, el estudiante debe adoptar un uso ético y responsable de las mismas. Se deben seguir las recomendaciones contenidas en el documento de "Recomendaciones para el uso de la inteligencia artificial en la UGR" publicado en esta ubicación:

https://ceprud.ugr.es/formacion-tic/inteligencia-artificial/recomendaciones-ia#contenido0

1) Protocolos de actuación y seguridad en los laboratorios de biología.

- Normas de seguridad, etiquetado y almacenamiento de residuos peligrosos.

- Clasificación de los agentes biológicos según su grupo de riesgo.

2) Preparación y análisis de muestras biológicas.

- Fundamentos teóricos de la microscopía.

- Preparación y observación de muestras celulares y tisulares al microscopio óptico.

- Aislamiento y observación de microorganismos.

- Preparación, valoración y cuantificación de biomoléculas.

El alumno sabrá/comprenderá:

• Los fundamentos de funcionamiento de los microscopios óptico y electrónico
• Los fundamentos básicos de las técnicas histológicas para la observación microscópica de muestras biológicas y adquiera experiencia práctica en algunas de ellas.
• Las técnicas de aislamiento, siembra y conservación de microorganismos.
• Diferenciar diferentes tipos de microorganismos y aprenda a realizar recuentos de microorganismos.
• Conocer las técnicas más habituales para la separación y análisis de biomoléculas

El alumno será capaz de:

• Manejar un microscopio óptico
• Manejar los cultivos bacterianos en condiciones de esterilidad.
• Interpretar protocolos y resultados de experimentos y a obtener conclusiones.
• Preparar reactivos y manejar instrumentos de precisión para pesar y medir pequeños volúmenes.
• Reconocer y realizar alguna técnica de espectrofotometría y su aplicación en la determinación de biomoléculas.
• Aislar biomoléculas del tejido de algún organismo superior y separarlas mediante procedimientos cromatográficos.
• Reconocer y realizar una electroforesis de proteínas en cellogel y su aplicación en la separación de proteínas séricas.

Tema 1. NORMAS DE SEGURIDAD EN LABORATORIOS DE BIOLOGÍA. Etiquetado de productos. Almacenamiento de residuos peligrosos. Clasificación de agentes biológicos según su grupo de riesgo. Normas básicas de seguridad en laboratorios de Biología.

Tema 2. TIPOS DE ORGANIZACIÓN CELULAR: EUCARIOTA Y PROCARIOTA. Introducción. Tamaño, formas, organización y estructuras celulares. Observación de células procariotas. Tinciones.

Tema 3. PRINCIPIOS GENERALES DE LOS DIFERENTES TIPOS DE MICROSCOPÍA ÓPTICA. Fundamentos de funcionamiento del microscopio óptico. Diferentes tipos de microscopía óptica.

Tema 4. TÉCNICAS GENERALES DE PREPARACIÓN DE MUESTRAS BIOLÓGICAS PARA LA OBSERVACIÓN DE CÉLULAS Y TEJIDOS CON MICROSCOPÍA ÓPTICA. Principios generales de las técnicas de fijación, inclusión, microtomía, tinción y montaje de muestras biológicas para su estudio con microscopía óptica.

Tema 5. PRINCIPIOS GENERALES Y TIPOS DE MICROSCOPÍA ELECTRÓNICA. PREPARACIÓN DE MUESTRAS BIOLÓGICAS PARA MICROSCOPÍA ELECTRÓNICA. Fundamentos y aplicaciones de los microscopios electrónicos de transmisión y de barrido. Principios generales de las técnicas de fijación, inclusión, ultramicrotomía y contraste de muestras biológicas para su estudio con microscopía electrónica de transmisión. Técnicas de preparación de muestras para su estudio con microscopía electrónica de barrido.

Tema 6. TÉCNICAS ESPECIALES DE PREPARACIÓN DE MUESTRAS BIOLÓGICAS: HISTOQUÍMICA, INMUNOCITOQUÍMICA, HIBRIDACIÓN IN SITU Y CITOMETRÍA DE FLUJO. Principios generales y aplicaciones de las técnicas para la detección de moléculas en células y tejidos.

TEMA 7. CULTIVO DE MICROORGANISMOS. Conceptos generales sobre nutrición. Categorías nutricionales bacterianas. Tipos de medios de cultivo .Técnicas de siembra. Condiciones de cultivo. Crecimiento en sistemas cerrados. Curva de crecimiento. Cultivo puro o axénico. Obtención de cultivos puros.

Tema 8. TÉCNICAS DE RECUENTO DE MICROORGANISMOS. Introducción. Medidas directas e indirectas. Métodos directos/indirectos para biomasa. Métodos directos/indirectos para recuento o número. Recuento de totales y recuento de viables.

Tema 19. CONTROL DEL CRECIMIENTO MICROBIANO. Introducción. Muerte de las poblaciones microbianas. Esterilización. Agentes esterilizantes físicos: calor, radiaciones, filtración. Agentes esterilizantes químicos. Control de la esterilización.

Tema 10. ESPECTROSCOPÍA DE ABSORCIÓN UV-VISIBLE. Fundamentos teóricos. Espectrofotómetros. Aplicaciones

Tema 11. CENTRIFUGACIÓN. Fundamentos teóricos. Centrifugación preparativa. Instrumentación. Tipos de centrifugación.

Tema 12. ELECTROFORESIS. Fundamentos teóricos. Electroforesis de proteínas y de ácidos nucleicos.

Tema 13. CROMATOGRAFÍA. Clasificación y tipos. Cromatografía en capa fina. Cromatografía en columna.

PRÁCTICAS DE LABORATORIO

BLOQUE I

Práctica 1. Fundamentos y utilización del microscopio óptico.

Práctica 2. Fundamentos de fijación, inclusión y microtomía de muestras biológicas. Tinción de secciones histológicas.

Práctica 3. Tinciones especiales de secciones histológicas.

BLOQUE II

Práctica 4. Observación de microorganismos con microscopio óptico.

Práctica 5. Aislamiento y siembra de microorganismos en diferentes tipos de medios de cultivo.

Práctica 6. Obtención de cultivos puros.

Práctica 7. Aislamiento de microorganismos de muestras naturales. Observación.

Práctica 8. Recuento de microorganismos.

BLOQUE III

Práctica 9. Determinación de espectros de absorción.

Práctica 10. Determinación cuantitativa de biomoléculas por espectrofotometría.

Práctica 11. Separación de biomoléculas mediante cromatografía.

Práctica 12. Análisis de ADN mediante electroforesis.

• MONTUENGA L, ESTEBAN FJ y CALVO A. 2014. Técnicas en Histología y Biología Celular. 2ª edición. Elsevier Masson.

• MADIGAN MT, MARTINKO JM, BENDER, K.S., BUCKLEY D.H. y Stahl, D.A. 2015. “Brock. BiologÍa de los microorganismos”, 14ª Edición. Pearson Educación, S.A. 2015. ISBN 978-84-9035-279-3

• WILLEY J, SHERWOOD L y WOOLVERTON C. 2009. Microbiología de Prescott,Harley y Klein, 7ª edición. McGraw Hill Interamericana de España, S.A.U. ISBN 978-84-481-6827-8
• NELSON DL y COX MM. 2009. Lehninger. Principios de Bioquímica, 5ª Edición. Ediciones Omega S.A. Barcelona.

• VOET D, VOET JG y PRATT CW. 2007. Fundamentos de Bioquímica, 2ª Edición. Editorial Médica Panamericana. Buenos Aires.

• BANCROFT JD y GAMBLE M. 2002. Theory and practice of histological techniques, 5ª edición. Editorial Churchill Livingstone.
• ALBERTS B, BRAY D, JOHNSON A, LEWIS J, RAFF, M, RIBERTS K, WATSON JD. 2004. Biología Molecular de la Célula, 4ª edición. Ediciones Omega.
• ANDERSON RP. 2006. Outbreak: Cases in Real-World Microbiology. ASM Press. EEUU.
• WISTREICHGA. 2007. Microbiology Perspectives: A Photographic Survey of the Microbial World, 2ª Edición.Prentice Hall. UpperSaddleRiver. New Jersey.
• ROCA P, OLIVER J y RODRÍGUEZ AM. 2003. Bioquímica. Técnicas y Métodos. Editorial Hélice. Madrid.
• GARCÍA-SEGURA JM et al. Técnicas Instrumentales de Análisis en Bioquímica. 1996. Editorial Síntesis. Madrid.

• http://micro.magnet.fsu.edu/primer/index.html. Excelente página sobre microscopía, con explicaciones sobre el funcionamiento de los diversos tipos de microscopios y tutoriales en java sobre el manejo de los mismos.
• http://bris.ac.uk/pathandmicro/cpl/lablinks.html. Manual de técnicas de preparación de muestras y tinción.
• http://microbiol.org/. Página sobre Microbiología con noticias, imágenes y diferentes recursos.
• http://www.bacteriamuseum.org/. Museo virtual de bacterias.
• https://biomanbio.com/Animaciones y pequeños simuladores de procesos complejos como la Glucólisis, el Ciclo de Krebs, la Cadena de Transporte de Electrones o la replicación del ADN.
• https://www.csic.es/es Recursos didácticos gratuitos, exposiciones virtuales descargables, libros de la colección
• https://mappingignorance.org/ Artículos semanales escritos por investigadores que explican los últimos descubrimientos en biología molecular, biomedicina, neurociencia y química.
• https://myscope.training/ Cursos interactivos gratuitos que van desde la teoría más básica hasta simuladores virtuales donde puedes "operar" de forma simulada un microscopio electrónico de barrido (SEM) o de transmisión (TEM), ajustando el enfoque, el brillo y los aumentos
• https://askabiologist.asu.edu/ Herramientas como el Cell Size SIM (para estudiar la relación núcleo/citoplasma), herramientas de disección virtual muy completas y simuladores de microscopía donde aprendes a calibrar y enfocar muestras virtuales antes de tocar un microscopio real en la facultad.

• MD01. Lección magistral/expositiva 
• MD02. Sesiones de discusión y debate 
• MD03. Resolución de problemas y estudio de casos prácticos 
• MD04. Prácticas de laboratorio y/o clínicas y/o talleres de habilidades 
• MD05. Prácticas de campo 
• MD06. Prácticas en sala de informática 
• MD07. Seminarios 
• MD09. Análisis de fuentes y documentos 
• MD10. Realización de trabajos en grupo 
• MD11. Realización de trabajos individuales 

La valoración del nivel de adquisición por parte de los estudiantes de las competencias generales y específicas propias de una docencia con prácticas de laboratorio se llevará a cabo mediante:

- Evaluación de los conocimientos adquiridos en clases teóricas. Examen teórico presencial con tres partes, cada una de ellas correspondiente a cada uno de los módulos de la asignatura (I-Biología Celular, II-Microbiología, III-Bioquímica): 57% de la calificación final. Es necesario obtener el 50 % de la puntuación en este apartado para superar la asignatura.

- Evaluación de la actividad desarrollada en el laboratorio, donde se determinarán las competencias adquiridas mediante la valoración de los resultados obtenidos durante la realización de las actividades prácticas, la realización de preguntas y/o exámenes: 29% de la calificación final. Es obligatoria la asistencia a todas las sesiones prácticas de laboratorio y obtener el 50 % de la puntuación en este apartado para superarlas. Si no se superan las prácticas no se podrá superar la asignatura.

-Evaluación de la participación en seminarios y tutorías dirigidas: 8% de la calificación final.

-Evaluación de la asistencia, actitud y participación: 6 % de la calificación final.

Criterios de evaluación:

- Evaluación de la parte teórica:

Módulo de Biología Celular supondrá un 19 %

Módulo de Microbiología supondrá un 19 %

Módulo de Bioquímica supondrá un 19 %

- Evaluación de la parte práctica:

Módulo de Biología Celular supondrá un 9%

Módulo de Microbiología supondrá un 10%

Módulo de Bioquímica supondrá un 10%

La calificación final será la suma de las valoraciones numéricas de los 4 apartados. Para superar la asignatura el alumno deberá obtener una calificación final de 5 o más puntos, siempre y cuando haya obtenido al menos el 50% de la puntuación máxima en los apartados de teoría y prácticas de laboratorio.

En caso de no superar el porcentaje requerido para aprobar la asignatura en alguna de las partes teórica o práctica, la calificación será de SUSPENSO y la nota numérica reflejada en el acta será el valor numérico más alto de las partes suspensas.

- Examen teórico presencial para la evaluación de los conocimientos adquiridos en las clases teóricas, seminarios y clases prácticas. Constará de tres partes, cada una de ellas correspondiente a cada uno de los módulos de la asignatura (I-Biología Celular, II-Microbiología, III-Bioquímica). 71% de la calificación final.

- Examen práctico. Constará de tres partes, cada una de ellas correspondiente a cada uno de los módulos de la asignatura. 29% de la calificación final.

En caso de superar la parte práctica pero no la teórica en la convocatoria ordinaria, la calificación de la parte práctica se guardará para la convocatoria extraordinaria salvo petición expresa del estudiante en sentido contrario.

Criterios de evaluación:

- Evaluación de la parte teórica:

Módulo de Biología Celular supondrá un 23 %

Módulo de Microbiología supondrá un 24 %

Módulo de Bioquímica supondrá un 24 %

- Evaluación de la parte práctica:

Módulo de Biología Celular supondrá un 9%

Módulo de Microbiología supondrá un 10%

Módulo de Bioquímica supondrá un 10%

La calificación final será la suma de las valoraciones numéricas de los dos apartados. Para superar la asignatura el alumno deberá obtener una calificación final de 5 o más puntos, siempre y cuando haya obtenido al menos el 50% de la puntuación máxima en cada uno de los dos apartados.

En caso de no superar el porcentaje requerido para aprobar la asignatura en alguna de las partes teórica o práctica, la calificación será de SUSPENSO y la nota numérica reflejada en el acta será el valor numérico más alto de las partes suspensas.

El calendario de exámenes ordinarios y extraordinarios del curso académico 2026-2027 puede ser consultado en la web del Grado.

-Examen teórico sobre los contenidos de los programas teórico y práctico de la asignatura, 60% de la calificación final.

-Examen práctico, 40% de la calificación final.

Criterios de evaluación: los mismos que para convocatoria extraordinaria

La calificación final será la suma de las valoraciones numéricas de los dos apartados. Para superar la asignatura el alumno deberá obtener una calificación final de 5 o más puntos, siempre y cuando haya obtenido al menos el 50% de la puntuación máxima en cada uno de los dos apartados.

En caso de no superar el porcentaje requerido para aprobar la asignatura en alguna de las partes teórica o práctica, la calificación será de SUSPENSO y la nota numérica reflejada en el acta será el valor numérico más alto de las partes suspensas.

El calendario de exámenes ordinarios y extraordinarios del curso académico 2025-26 puede ser consultado en el siguiente enlace:

http://grados.ugr.es/biologia/pages/infoacademica/convocatorias

Medidas preventivas en los laboratorios de prácticas y/o talleres. Guía de buenas prácticas para laboratorios experimentales docentes (dirigida tanto a estudiantes como a profesorado):

https://ssp.ugr.es/informacion/noticias/medidas-preventivas-generales-laboratorios-talleres

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