FUNDAMENTOS DE BIOLOGÍA APLICADA III

662 11 51

Programa Teórico

Módulo 1 (Biología Celular).-

Principios generales y técnicas de utilización de la microscopía óptica. Apertura numérica y poder de resolución en el microscopio óptico. Fundamentos de funcionamiento. La microscopía de campo claro y de campo oscuro. Microscopía de contraste de fases. Contraste diferencial de Nomarski. Microscopía de polarización. Aplicaciones de las diferentes técnicas microscópicas.

Técnicas generales para la observación de células y tejidos a microscopía óptica. Principios generales y métodos de fijación. Métodos de inclusión. Microtomía: tipos de microtomos y aplicaciones. Utilización de montajes totales (whole-mounts). Principios de utilización de los colorantes: técnicas de tinción. Montaje. Análisis de las condiciones de las muestras durante el proceso de preparación.

Principios generales y técnicas de aplicación de la microscopía electrónica. El microscopio electrónico: fundamentos y aplicaciones. El microscopio electrónico de trasmisión. El microscopio electrónico de barrido. Microscopía electrónica analítica. Nuevas microscopías.

Técnicas generales de preparación de muestras para microscopía electrónica. Principios y métodos de fijación. Procedimientos de inclusión. Ultramicrotomía. Métodos de contraste. Preparación de muestras para microscopía de barrido.

Técnicas especiales en microscopía electrónica. Tinción negativa. Criofractura y criograbado. Microanálisis de rayos X y de pérdida de energía de electrones.

Microfotografía. La obtención de imágenes fotográficas con el microscopio. Aumento y resolución. Condiciones para la obtención de negativos. Tipos de soportes. El positivado. Fotografía en color y en blanco y negro. Cinematografía y video. Captura de imágenes.

Técnicas histoquímicas. Citoquímica e histoquímica. Principios de reacción. Métodos de preparación. Estequiometría y cuantificación. Aplicaciones de las técnicas histoquímicas.

Autorradiografía. Isótopos: tipos y aplicaciones. Incorporación de isótopos. Principios generales de las técnicas autorradiográficas. Métodos de preparación de muestras. Emulsiones fotográficas. Exposición y revelado.

Fraccionamiento celular. Homogenados: métodos de obtención. Características de las partículas subcelulares. Condiciones de extracción. Centrifugación diferencial. Obtención de homogenados y sobrenadantes. Separación de fracciones.

Micromanipulación. Principios y aplicaciones. Los micromanipuladores. Extracción de componentes celulares. Inyección intracelular de moléculas. Marcadores celulares.

Técnicas microcópicas especiales. La microscopía de fluorescencia. Fluorocromos: tipos y aplicaciones. La detección del marcado fluorescente. Microscopía de barrido laser confocal: principios y aplicaciones. Interpretación de la imagen del microscopio confocal.

Inmunocitoquímica. Fundamentos de las técnicas inmunocitoquímicas. El uso de anticuerpos mono y policlonales. Preparación de muestras para inmunocitoquímica. El marcado de anticuerpos. Amplificación.

Hibridación in situ. Principio y aplicaciones. Métodos de preparación. Obtención de sondas. Marcaje de sondas.

Estereología. Métodos de muestreo. Parámetros morfométricos. Establecimiento de criterios de medida. Incidencia de los métodos preparativos. Interpretación de los datos cuantitativos. Indices de fiabilidad.

Cultivos in vitro de células y órganos. Cultivos de células animales y vegetales. Cultivos primarios y células transformadas. Hibridación celular mediante fusión. Cultivos organotípicos.

 

Módulo 2 (Fisiología)

Introducción a la experimentación fisiológica.

Métodos de estimulación, medida y registro en experimentación animal.

Células excitables Músculo

Sistema Nervioso

Medio Interno

Sistema circulatorio. I. Corazón.

Sistema circulatorio. II. Vasos

Sistema Respiratorio

Sistema digestivo

Nutrición Y Metabolismo

Sistema renal

Sistema endocrino

Sistema Reproductor

Aplicación de técnicas citológicas.

Aplicación de técnicas de Bioquímica y Biología Molecular

Aplicación de técnicas inmunológicas.

Módulo 3 (Biología Animal)

Introducción al método científico en Zoología. Introducción al método científico especificando algunas de las diferencias más importantes que existen según las ciencias. El método científico aplicado a la Zoología. Fases del método científico en general. Aplicación de estas fases a la Zoología y avances que se han producido en Zoología utilizando el método científico.

Diseño de muestreo y técnicas de muestreo y censo en Zoología. Introduccion. Importancia de métodos de muestreo y censo en estudio de biodiversidad, dinámica poblacional y conservación y gestión de fauna.

Diseño de muestreo: conceptos básicos. Establecimiento de objetivos del estudio. Importancia de conocer la biología de los organismos. Replicación y tamaño de muestra: elección de la unidad de muestreo. Representatividad de las muestras: consideración de la variabilidad espacio-temporal. Muestreo al azar y muestreo estratificado.

Técnicas básicas de muestreo y censo.

Comprobación de hipótesis en Zoología. Las respuestas a la pregunta ¿por qué?. Respuesta a esta pregunta como base del avance científico. Diferentes tipos de respuesta: causal, funcional, evolutiva y ontogenética.

Comprobación de hipótesis en Zoología. Comprobación de hipótesis como la fase más importante del método científico. Métodos de comprobación de hipótesis:

Programa práctico

Módulo 1.

Realización de preparaciones histológicas sobre material biológico animal y vegetal

Toma de microfotografias sobre preparaciones de microscopía óptica

Principios de utilización de instrumentación para la investigación en Biología Celular.

Presentación de un proyecto de investigación.

Bases de datos.

Módulo 2.

Práctica 1. Técnicas quirúrgicas: conocimiento y manejo del material quirúrgico habitual. Asepsia. Canulación de venas y arterias. Suturas. Extirpación de glándulas.

Práctica 2. Orquidectomía en la rata. Terapia sustitutoria con testosterona. Análisis de los efectos tróficos de la testosterona sobre las vesículas seminales.

Práctica 3. Músculo liso: contracción del íleon de conejo. Efectos de la acetilcolina y del bloqueo colinérgico. Efectos de la adrenalina.

Práctica 4. Preparación de corazón aislado de cobaya. Registro de su actividad en un quimógrafo. Efectos de la acetilcolina, la adrenalina y la temperatura.

Práctica 5. Preparación de rana espinal. Estudio de los reflejos medulares. Estudio de los reflejos de enderezamiento, de evitación y comportamiento locomotor.

Módulo 3.

Normas de evaluación

La evaluación de la asignatura se llevará a cabo mediante dos exámenes parciales y un examen final, junto con las calificaciones obtenidas en las prácticas. Los exámenes parciales incluirán un primer parcial correspondiente al primer módulo (Biología Celular) y un segundo parcial de las materias de los dos módulos restantes (Fisiología y Zoología).

En el examen final y en la convocatoria de Septiembre, los alumnos que deban presentarse se examinarán exclusivamente del módulo o módulos que no hayan superado en los parciales.

Para aprobar la asignatura, será necesario obtener calificación en los tres módulos. La nota de la asignatura será la nota media de las calificaciones obtenidas en los tres módulos.